OS30p+快速植物胁迫测量仪

一、 概述

经济、轻便、精确、可靠的调制式叶绿素荧光测量系统。

二、 用途

广泛应用于植物生理、生态、农学、园艺和生物技术等学科的叶绿素荧光相关研究，特别适用于植物胁迫的相关研究。

三、 原理

采用的是*的调制-饱和-脉冲技术。测量时，先将叶片暗处理一段时间，然后再在饱和光强下暴露短暂的时间，测量这段时间内荧光强度随时间变化的荧光动力学曲线。曲线的形状和重要的瞬时值可以用于指示环境胁迫对光合器官的损伤。

四、 特点

Ø “JIP” Test – OJIP：

可直接读取以下数据：O、J、I、P、t100μs、t300μs (或K)、tFm (或到达Fm的时间)、A (曲线上方的面积)、MO (或RC/ABS)、PIABS (或performanceIndex)、FO/FM、FV/FM及FV/FO。更重要的是，OS30p+直接测量Fo，而不是通过计算获得。同时，它还可以直接显示设置，以及彩色的使用对数坐标轴的测量曲线，并直接读取使用最多的测量参数。设备使用的是红色光化光，光强可以调节。

Ø FV/FM、FV/Fo

具有自动的程序，使用8个点的均值、确保仅25ms内达到值的叶绿素荧光被测量，因此，对于陆地植物或海藻来说，饱和脉冲的持续时间问题将不存在，确保将误差控制在最小的范围内。

Ø Y(II)、ETR等测量模块

为适应更多胁迫测量的需求，提供额外的Y(II)测量模块，可测量叶温、空气相对湿度、Y(II)、ETR、叶片对PAR吸收比例、PAR等参数。

Ø 操作简单、测量快速

Ø USB数据输出

Ø 彩色显示屏

Ø 坚固、耐用、适于野外使用的设计

Ø 手持式操作、提供野外便携箱

五、 组成

标准配置：主机、10个暗适应叶夹、电池充电器、USB数据线、野外便携箱。

可选件：暗适应叶夹包，50个/包。

六、 技术参数

Ø FV/FM、FV/FO：

1) 饱和强度：600- 6000μmols ，设定从10%到99%

2) 饱和光源：红色点阵660 nm的LEDs

3) 调制光源：红色0.2到1.0 umols

4) 检测方法：调制脉冲

5) 检测器与过滤器：具有700-750 nm波段过滤器的Pin光电二极管

6) 测试时间：0.1s到1.5 s，默认的饱和脉冲持续时间是1s，；但是仪器软件采用取每25ms测量值的平均值的方式计算Fo和Fm，可作为陆生和海藻植物理想的测量工具。

7) 调制光调节：10%到99%手动调节

8) 测量和作图参数：FO、FM、FV/FM、FV/FO

Ø JIP测量：

1) 光化光强度：6000 umols,4500umol, 3500 umols, 3000umols, 2500 umols,1000 umols, 875 umols, 525 umols,300 umols, 200 umols, 100 umols, & 50 umols. 一个650nm点阵LEDs用于光化光照明

2) 检测方法：具有700-750nm波段过滤的Pin光电二极管；使用红色脉冲调制光源，取样时间在10us 到1s

3) 测量时间：JIP测量3 - 300s

4) JIP测量参数：O, t100us, t300us(or K), t2ms (or J), t30ms (or I), P, tFM, A (area above the curve), MO (orRC/ABS), PI/ABS (or performance index) FO, FM, FV/FM, FV/FO, Fo为实测值。S, M, T也是实测值; 但他们只记录于数据文件中，并不再测量屏上显示。每个数据文件可存储32个曲线数据。

Ø Y(II)测量：

1) 光化光强度：7000 umols白色LEDs，具有PAR叶夹

2) 检测方法：具有700-750nm波段过滤的Pin光电二极管；使用红色脉冲调制光源，取样时间在10us 到1s

3) 测量时间：小于3s

4) Y(II)测量参数 Y(II)或ΔF/Fm‘、ETR、PAR、T、FMS或FM’、Fs、α(叶片吸收)。

Ø 通用参数：

1) 显示：彩色图形显示

2) 存储：JIP测量中，每个数据文件可存储160000次测量及32个曲线；使用多个数据文件，可存储上百个曲线。

3) 数字输出：USB端口

4) 电池：工作时间8小时的镍氢充电电池

5) 尺寸：18cm×7 cm× 6cm.

6) 重量：1.25lbs.

7) 便携箱：包含于标准配置 36cm×28cm×15cm

七、 产地:美国

八、 参考文献

l Kautsky H.,Hirsch A. (1931) Neuw Versuche zur Kohlensaureassimilation. Naturwissenshaften19, 964.

l Kitajima M,Butler WL (1975) Quenching of chlorophyll fluorescence and primaryphotochemistry in chloroplasts by dibromothymoquinone. Biochim Biophys Acta376:105-115

l Strasser R.J,Tsimilli-Michael M., and Srivastava A. (2004) - Analysis of Chlorophyll aFluorescence Transient. From Chapter 12, “Chlorophyll a Fluorescence aSignature of

l Photosynthesis”,edited by George Papaqeorgiou and Govindjee, published by Springer 2004, PO Box17, 3300 AA Dordrecht, The Netherlands, page 340

l Vredenberg Wim(2011) Kinetic analyses and mathematical modeling of primary photochemical andphotoelectrochemical processes in plant photosystems, BioSystems Contents listsavailable at journal